Meios de cultura e efeito do óleo essencial de melaleuca no crescimento micelial de Stemphylium sp.

Flávia de Oliveira Borges Costa Neves; Luciana Santos Rodrigues Costa Pinto; Marcia Toyota Pereira; Henrique Gualberto Vilela Penha; Igor Souza Pereira

doi:10.18004/investig.agrar.2021.junio.2301578

Authors

Flávia de Oliveira Borges Costa Neves Instituto Federal de Educação, Ciência e Tecnologia do Triângulo Mineiro, Campus Uberlândia, Curso de Engenharia Agronômica. Uberlândia, MG, Brasil. https://orcid.org/0000-0002-4930-5804
Luciana Santos Rodrigues Costa Pinto Instituto Federal de Educação, Ciência e Tecnologia do Triângulo Mineiro, Campus Uberlândia, Curso de Engenharia Agronômica. Uberlândia, MG, Brasil. https://orcid.org/0000-0002-4930-5804
Marcia Toyota Pereira Faculdade Unyleya de Pós-graduação, Polo de Pós-graduação Uberlândia. Uberlândia, MG, Brasil. https://orcid.org/0000-0002-9315-6930
Henrique Gualberto Vilela Penha Instituto Federal de Educação, Ciência e Tecnologia do Triângulo Mineiro, Campus Uberlândia, Curso de Engenharia Agronômica. Uberlândia, MG, Brasil. https://orcid.org/0000-0003-1574-5649
Igor Souza Pereira +1503432338878 https://orcid.org/0000-0003-1158-119X

DOI:

https://doi.org/10.18004/investig.agrar.2021.junio.2301578

Keywords:

In vitro control, Melaleuca alternifolia, Stemphylium leaf blight

Abstract

Species of Stemphylium genus are responsible for many plant diseases, as solanaceas in which stemphylium leaf blight, which productivity of these crops can be negatively affected due lacking in available fungicides. Therefore, the purpose of this work was to determine a culture medium that would allow of Stemphylium sp. mycelial growth isolated from onion for a later evaluation of melaleuca oil (M. alternifolia) effect under different in vitro concentrations. For this, in the first test eight culture media were tested: Potato-Dextrose-Agar (PDA); Juice V-8® 5% Agar; V-8® Juice 10% Agar; Juice V-8® Agar 20%; Tomato Juice 5% (ST5%); Tomato Juice 10% (ST10%); Tomato Juice 20% (ST20%) and Malt Extract Agar 2%. At ten days and fifteen days, the highest growth was identified with treatments ST20% and PDA and, conversely, treatments V8-5% and V8-10% the lowest growth. In the second trial, melaleuca oil was tested in five concentrations (0; 0, 2; 0,4; 0,6 and 0,8%) diluted in PDA and the MGR (mycelial growth rate) was determined. The melaleuca essential oil reduced the Stemphylium sp. mycelial growth with better fit to the quadratic equation y=28,074x2 - 46,136x + 19,94. The MGR was reduced by the oil added to culture medium and could represent a promising alternative for this pathogen control.

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References

Alfenas, A. C. & Mafia, R. G (Eds). (2016). Métodos em fitopatologia. (2° ed). Viçosa: UFV.

Aparecido, C. C. & Finatti, D. (2012). Variabilidade patogênica de isolados de Verticillium obtidos de diferentes hospedeiros. São Paulo: Governo do estado de São Paulo, Secretaría de Agricultura e Abastecimiento, Agência Paulista de Tecnología dos Agronegocios, 1-6. (Documento técnico 014).

Ávila, Z. R., Mello, S. C. M., Ribeiro, Z. M. A. & Fontes, E. M. G. (2000). Produção de inóculo de Alternaria cassiae. Pesquisa Agropecuária Brasileira, 35(3), 533-541.

Bishop, C. D. & Reagan, J. (1998). Control of storage pathogen Botrytis cinerea on dutch white cabbage (Brassica oleraceae var. capitata) by the essencial oil of Melaleuca alternifolia. Journal of Essential Oil Research, 10(1), 57-60.

Carson, C. F., Hammer, K. A. & Riley. T. V. (2006). Melaleuca alternifolia (Tea Tree) oil: a review of antimicrobial and other medicinal properties. Clinical Microbiology Reviews, 19(1), 50-62.

Castellani, A. (1939). Viability of some pathogenic fungi in distilled water. Journal of Tropical Medicine and Hygiene, 42(2), 225-226.

Castelo, A. V. M., Afonso, S. R., De Melo, R. R., Del Menezzi, C. H. S., Camillo, J. & Vieira, R. F. (2013). Rendimento e composição química do óleo essencial de Melaleuca alternifolia Chell, na região do Distrito Federal. Revista Brasileira de Ciências Agrárias, 8(1), 143-147.

Concha, J. M., Moore, L. S. & Holloway, W. J. (1998). Antifungal activity of Melaleuca alternifolia (tea-tree) oil against various pathogenic organisms. Journal American Pediatric Medical Association, 88(10), 489-92.

Cox, S. D., Mann, C. M., Markham, J. L., Bell, H. C., Gustafson, J. E., Warmington, J. R. & Wyllie, S. G. (2000). The mode of antimicrobial action of the essential oil of Melaleuca alternifolia (tea tree oil). Journal of Applied Microbiology, 88(1), 170-175.

Chidi, F., Bouhoudan, A. & Khaddor, M. (2020). Antifungal effect of the tea tree essential oil (Melaleuca alternifolia) against Penicillium griseofulvum and Penicillium verrucosum. Journal of King Saud University - Science, 32(3), 2041-2045.

Cramer, C. S. (2000). Breeding and genetics of Fusarium basal rot resistance in onion. Euphytica, 115(3), 159-166.

Dias, I. E. (2012). Crescimento micelial e produção de toxicinas por fungos de armazenamento associados a grãos de milho sob diferentes níveis de restrição hídrica (Dissertação de mestrado). Universidade Federal de Lavras, Lavras.

Dhingra, O. D. & Sinclair, J. B. (1995). Basic plant pathology methods. Boca Raton: CRC Press.

Ellis, M. B. (1971). Dematiaceous hyphomycetes. X. Mycological Papers, 125, 1-30.

Fancelli, M. I. (1991). Comparação patogênica, cultural, serológica e eletroforética entre isolados de Alternaria solani do tomate e da batata e variabilidade patogênica de A. solani f. sp. lycopersici N. F. (Tese de Doutorado). Universidade de São Paulo, Escola Superior de Agricultura “Luiz de Queiroz”, Piracicaba, São Paulo

.

Ferreira, D. F. (2000). Manual do sistema Sisvar para análises estatísticas. Lavras: UFLA.

Hammer, K. A., Carson, C. F. & Riley, T. V. (2004). Antifungal effects of Melaleuca alternifolia (tea tree) oil and its components on Candida albicans, Candida glabrataand Saccharomyces cerevisiae. Journal of Antimicrobial Chemotherapy, 53(6), 1081-1085.

Leão, E. U., Santos, G. R. dos, Sarmento, R. A., Reis, M. R. dos & Chagas Júnior, A. F. (2012). Crescimento micelial e produção de conídios de Ascochyta cucumis em diferentes meios de cultura e regimes de luz. Bioscience Journal, 28(2), 325-331.

Santos Martins, J. A. S., Sagata, E., Araújo Santos,V. A. & Juliatti, F. C. (2010). Avaliação do efeito do óleo de Melaleuca alternifolia sobre o crescimento micelial in vitro de fungos fitopatogênicos. Bioscience Journal, 27(1), 49-51.

Marinelli, E., Orzali, L., Lotti, E. & Riccioni, L. (2012). Activity of some essential oils against pathogenic seed borne fungi on legumes. Asian Journal of Plant Pathology, 6(3), 66-74.

Miller, M. E. & Lacy, M. L. (1995). Purple blotch. In: H. F Schwartz, S. K. Mohan (Eds.), Compendium of onion and garlic diseases (pp. 23-24). APS Press.

Miller, P. M. (1955). V-8 juice agar as a general purpose medium for fungi and bacteria. Phytopathology, 45(8), 461-462.

Ministerio de Agricultura Pecuária e Abastecimiento. (2018). AGROFIT : Sistemas de agrotóxicos fitossanitários. Recuperado de http://agrofit.agricultura.gov.br/agrofit_cons/principal_agrofit_cons

Papadopoulos, C. J., Carson, C. F., Hammer, K. A. & Riley, T. V. (2006). Susceptibility of pseudomonads to Melaleuca alternifolia (tea tree) oil and components. Journal of Antimicrobial Chemotherapy, 58(2), 449-451.

Ramos, K., Andreani Junior, R. & Kozusny-Andreani, D. I. (2016). Óleos essenciais e vegetais no controle in vitro de Colletotrichum gloeosporioides. Revista Brasileira de Plantas Medicinais, 18(2), 605-612.

Steffen, G. P. K., Maldaner, J., Steffen, R. B., Missio, E. L. & Mezzomo, R. (2019). Controle de Sclerotinia sclerotiorum e Fusarium sp. com óleo essencial de melaleuca. Enciclopédia Biosfera. (Vol. 16. No. 30). Goiânia: Centro Científico Conhecer.

Souza, A. D., Roggerio, T. U, Furlan, M. R. & Aoyama, E. M. (2015). Óleo de melaleuca (Melaleuca alternifolia Maiden & Betche, Cheel) no controle de cercosporiose em beterraba. Revista Brasileira de Plantas Medicinais, 17(4), 1078-1082.

Suheri, H. & Price T. V. (2000a). Infection by Alternaria porri and Stemphylium vesicarium on onion leaves and disease development under controlled environments. Plant Pathology, 49(3), 377-384.

Suheri, H. & Price T. V. (2000b). Stemphylium leaf blight of garlic (Allium sativum) in Australia. Australasian Plant Pathology, 29(3), 192-199.

Suheri, H. & Price T. V. (2001). The epidemiology of purple leaf blotch on leeks in Victoria. European Journal of Plant Pathology, 107(5), 503-510.

Trajano, V. N. & Santos, B. H. C. (2009). Effectiveness of Origanum vulgare L. and Origanum majorana L. essential oils in inhibiting the growth of bacterial strains isolated from the patients with conjunctivitis. Brazilian archives of biology and technology, 52(1), 45-50.

Teixeira, H., Chitarra, L. G., Arias, S. M. S. & Machado, J. C. (2001). Efeito de diferentes fontes de luz no crescimento e esporulação in vitro de fungos fitopatogênicos. Ciência e Agrotecnologia, 25(6), 1314-1320.

Vieira, T. R., Barbosa, L. C. A., Maltha, C. R. A., Paula, V. F. & Nascimento, E. A. (2004). Constituintes químicos de Melaleuca alternifolia (Myrtaceae). Química Nova, 27(4), 536-539.