Evaluación de aislados de Trichoderma spp. nativos del Paraguay para el control de Colletotrichum spp. causante de la antracnosis en frutilla

Andrés Dejesús Sanabria Velázquez

doi:10.18004/investig.agrar.2020.junio.53-62

Autores/as

Andrés Dejesús Sanabria Velázquez Instituto Paraguayo de Tecnología Agraria (IPTA), Centro de Investigación Hernando Bertoni (CIHB), Departamento Fitopatología. Caacupé, Paraguay. https://orcid.org/0000-0002-2038-5388

DOI:

https://doi.org/10.18004/investig.agrar.2020.junio.53-62%20

Resumen

Uno de los agentes de control biológico más estudiados y efectivos en varios fitopatosistemas, es el hongo Trichoderma spp.; sin embargo, en Paraguay no existen productos comerciales a base de aislados nativos. El objetivo del trabajo fue seleccionar aislados de Trichoderma nativos del Paraguay como biocontroladores de Colletotrichum spp. causante de la antracnosis en frutilla, midiendo la velocidad de crecimiento, sobreposición micelial y la capacidad de inhibición de crecimiento in vitro. Se verificaron diferencias significativas entre los aislados de Trichoderma spp. para la inhibición de crecimiento de Colletotrichum spp. registrándose valores de 50,00 hasta 74,44%, siendo el aislado TFC14-06 el que ejerció mayor inhibición. Para evaluar el efecto sobre la producción de frutilla, se realizaron aplicaciones semanales de la mezcla de la suspensión de esporas de Trichoderma spp. TKC14-03, TFC14-06 y TFLE-08 en las parcelas experimentales de frutilla variedad Dover del CIHB/IPTA. Durante evaluaciones de campo bajo condiciones de infección natural, no se observaron diferencias significativas entre los tratamientos testigo y tratados con la suspensión de esporas de Trichoderma. En conclusión, los aislados nativos TFC14-04, TFC14-05, y TFC14-06 presentan potencial antagónico ante Colletotrichum spp. en base a su capacidad de inhibición de crecimiento del patógeno in vitro. Sin embargo, bajo condiciones de infección natural del patógeno no se observó el efecto de la aplicación de la suspensión de esporas de Trichoderma sobre la producción de frutilla. Futuros trabajos de selección deberán evaluar aislados nativos de Trichoderma bajo condiciones ambientales controladas que aseguren una alta presión de la enfermedad

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.

Métricas

Cargando métricas ...

Citas

Aguado, A., Pastrana, A.M., De Los Santos, B., Romero, F., Sánchez, M. C. & Capote, N. (2014). Efficiency of natural products in the control of Colletotrichum acutatum monitored by real-time PCR. Acta Horticulturae, 1049, 329-334. DOI: https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2014.1049.44.

Bae, S. J., Mohanta, T. K., Chung, J. Y., Ryu, M., Park, G., Shim, S.,…Bae, H. (2016). Trichoderma metabolites as biological control agents against Phytophthora pathogens. Biological Control, 92, 128-138. DOI: https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2015.10.005.

Barratt, B. I. P., Moran, V. C., Bigler, F. & van Lenteren, J. C. (2018). The status of biological control and recommendations for improving uptake for the future. BioControl, 63(1),155-167. DOI: https://doi.org/10.1007/s10526-017-9831-y.

Barnett, H. L. & Hunter, B. B. (1998). Illustrated genera of imperfect fungi . The American Phytopathological Society. Washington State University, Pullman. APS Press. USA. St. Paul, Minnesota USA : Department of Agriculture, Agricultural Research Service, 218 p.

Bell, D. K., Wells, H. D. & Markham, C. R. (1982). In vitro antagonism of Trichoderma species six fungal plant pathogens. Phytopathology, 72, 379-382. DOI: https://doi.org/10.1094/Phyto-77-379.

Benítez-Díaz, P., Miranda-Contreras, L., Balza-Quintero, A., Sánchez-Gil, B. & Molina-Morales, Y. (2015). Residuos de plaguicidas en fresa (Fragraria x ananassa) cosechada en una región agrícola del Estado Mérida, Venezuela. Bioagro, 27(3), 181-188.

Bennett, A.J., Leifert, C. & Whipps, J. M. (2003). Survival of the biocontrol agents Coniothyrium minitans and Bacillus subtilis MBI 600 introduced into pasteurised, sterilised and non-sterile soils. Soil Biology and Biochemistry, 35(12), 1565-1573. DOI: https://doi.org/10.1016/j.soilbio.2003.08.001.

Budge, S.P. & Whipps, J.M. (1991). Glasshouse trials of Coniothyrium minitans and Trichoderma species for the biological control of Sclerotinia sclerotiorum in celery and lettuce. Plant Pathology, 40(1), 59-66. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1365-3059.1991.tb02293.x

Bunbury-Blanchette, A.L. & Walker, A.K. (2019). Trichoderma species show biocontrol potential in dual culture and greenhouse bioassays against Fusarium basal rot of onion. Biological Control , 130, 127-135. DOI: https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2018.11.007.

Carvalho, D. D. C., Inglis, P. W., Ávila, Z. R. de, Martins, I., Muniz, P. H. P. C. & Mello, S. C. M. de. (2018). Morphological characteristics and genetic variability of Trichoderma spp. from conventional cotton crop soils in Federal District, Brazil. Journal of Agricultural Science, 10(8), 146-155. DOI: https://doi.org/10.5539/jas.v10n8p146.

Chamorro, M., Aguado, A. & De los Santos, B. (2016). First report of root and crown rot caused by Pestalotiopsis clavispora (Neopestalotiopsis clavispora) on strawberry in Spain. Plant Disease, 100(7),1495. DOI: https://doi.org/10.1094/PDIS-11-15-1308-PDN.

Chiriboga, H., Gómez, G. y Garces, K. (2015). Protocolos para formulación y aplicación del bio-insumo: Trichoderma spp. para el control biológico de enfermedades. Asunción, PY: Instituto Interamericano de Cooperación para la Agricultura, 28 p.

Colman, A.A. (2011). Tratamiento químico y biológico en semillas de sésamo (Sesamum indicum L.) para el control de Macrophomina phaseolina. Tesis Ing. Agr. Carrera de Ingeniería Agronómica. San Lorenzo, PY : FCA, UNA, 50 p.

De Meyer, G., Bigirimana, J., Elad, Y. & Höfte, M. (1998). Induced systemic resistance in Trichoderma harzianum T39 biocontrol of Botrytis cinerea. European Journal of Plant Pathology , 104(3), 279-286. DOI: https://doi.org/10.1023/A:1008628806616.

Di Rienzo, J.A., Balzarini, M.G., Robledo, C.W., Casanoves, F., González, L.A. & Tablada, E.M. (2008). InfoStat Manual del Usuario. Editorial Brujas: Córdoba, Grupo InfoStat, FCA, Universidad Nacional de Córdoba, 336 p.

Diánez Martínez, F., Santos, M., Carretero, F. & Marín, F. (2016). Trichoderma saturnisporum, a new biological control agent. Journal of the Science of Food and Agriculture, 96(6), 1934-1944. DOI: https://doi.org/10.1002/jsfa.7301.

Dirección General de Estadística Encuestas y Censos. (2016). Compendio estadístico ambiental del Paraguay 2016. Asunción : DGEEC, 115 p. Disponible en http://www.dgeec.gov.py/Publicaciones/Biblioteca/compendio ambiental 2016/Compendio Estadistico Ambiental 2016.pdf.

Doldán Larrea, L.C.A. y González, J.D. (2013). Influencia de las organizaciones de productores en los resultados productivos y económicos en el cultivo de frutilla en la Compañia Estanzuela de Itaugua. Investigación Agraria 9(1), 38-43.

Franco, B. M. y Orrego Fuente, A. L. (2013). Compatibilidad in vitro de aislados nativos de Trichoderma spp. con fungicidas para el tratamiento de semillas. Investigación Agraria , 15(1), 15-22.

Fernández-Larrea Vega, O. (2001). Avances en el fomento de productos fitosanitarios no sintéticos (en línea). Manejo Integrado De Plagas (Costa Rica) (62), 96-100. DOI: https://doi.org/10.1080/09583150310001517992.

French, E.R. y Hebert, T.T. (1980). Métodos de investigación fitopatológica. San José (Costa Rica).: IICA (Instituto Interamericano de Cooperación para la Agricultura), 43 p.

Gamarra Sosa, G. (2013). Control biológico de hongos fitopatógenos del suelo con aislados de Trichoderma spp. en el cultivo de ka´a he´e (Stevia rebaudiana [Bertoni] Bertoni) Tesis Ing. Agr. San Lorenzo, PY, Carrera de Ingeniería Agronómica. San Lorenzo : FCA, UNA, 51 p.

Garcete Gómez, J.M. y Orrego Fuente, A.L. (2011). Efecto de aislados nativos de Trichoderma spp. en la incidencia de Macrophomina phaseolina (Tassi) Goid en sésamo (Sesamum indicum L.) Effect. Investigación Agraria , 22(2), 87-93.

Garrido, C., Carbú, M., Fernández-Acero, F. J., Boonham, N., Colyer, A., Cantoral, J. M. & Budge, G. (2009). Development of protocols for detection of Colletotrichum acutatum and monitoring of strawberry anthracnose using real-time PCR. Plant Pathology , 58(1), 43-51. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1365-3059.2008.01933.x.

Gétaz, M., van der Wolf, J.M., Blom, J. y Pothier, JF. (2017). Complete genome sequences of three isolates of Xanthomonas fragariae, the Bacterium Responsible for angular leaf spots on strawberry plants. Genome Announcements, 5(32):e00642-17.DOI: https://doi.org/10.1128/genomeA.00642-17.

Grabowski, C., Orrego, A. y Soilán, L. (2014). Control biológico de enfermedades de plantas en América Latina y el Caribe”. En: Bettiol, W., Rivera, M. C., Mondino, P. y Montealegre, J. R., eds. Control biológico de enfermedades de plantas en Paraguay, pp. 309-321

Han, Y. C., Zeng, X.G., Xiang, F. Y., Ren, L., Chen, F. Y. & Gu, Y. C. (2016). Distribution and characteristics of colletotrichum spp. Associated with anthracnose of strawberry in Hubei, China. Plant Disease , 100(5), 996-1006. DOI: https://doi.org/10.1094/PDIS-09-15-1016-RE.

Han, Y. C., Zeng, X. G., Xiang, F. Y., Zhang, Q. H., Guo, C., Chen, F.Y. & Chen, G. (2018). Carbendazim sensitivity in populations of Colletotrichum gloeosporioides complex infecting strawberry and yams in Hubei Province of China. Journal of Integrative Agriculture, 17(6), 1391-1400. DOI: https://doi.org/10.1016/S2095-3119(17)61854-9.

Insaurralde, L., Sanabria Velázquez, A., Verdina, D., Sotelo, P. & Barúa, J. (2017). Isolation and characterization of native Trichoderma spp . and phytopathogenic fungi in Paraguay. In IV Congreso Nacional de Ciencias Agrarias. FCA/UNA (ed.). Asunción, PY: FCA/UNA, p. 1071-1074.

Lamdan, N. L., Shalaby, S., Ziv, T., Kenerley, C. M. & Horwitz, B.A. (2015). Secretome of the biocontrol fungus Trichoderma virens co-cultured with maize roots: role in induced systemic resistance. Molecular & cellular proteomics, 14(4), 1054-1063. DOI: https://doi.org/10.1074/mcp.M114.046607.

Louzada, G. A. S., Barbosa, H. N., Carvalho, D. D. C., Martins, I., Junior, M. L. & Mello, S. C. M. (2016). Relações entres testes com metabólitos e seleção de isolados de Trichoderma spp. antagônicos a Sclerotinia sclerotiorum. Revista Brasileira de Biociências, 14(1), 9-14.

McInnes, T.B., Black, L.L. & Gatti, J. (1992). Disease-free plants for management of strawberry anthracnose crown rot. Plant Disease , 78(3), 260-264. DOI: https://doi.org/10.1094/PD-76-0260.

Mochizuki, M., Yamamoto, S., Aoki, Y. & Suzuki, S. (2012). Isolation and characterisation of Bacillus amyloliquefaciens S13-3 as a biological control agent for anthracnose caused by Colletotrichum gloeosporioides. Biocontrol Science and Technology, 22(6), 697-709. DOI: https://doi.org/10.1080/09583157.2012.679644.

Neri, D., Baruzzi, G., Massetani, F. & Faedi, W. (2012). Strawberry production in forced and protected culture in Europe as a response to climate change. Canadian Journal of Plant Science, 92(6), 1021-1036. DOI: https://doi.org/10.4141/CJPS2011-276.

Orrego Fuente, A. L., Pino, C. D. & Rodríguez, H. N. (2010). Evaluación de productos para control del complejo de enfermedades foliares de la Mentha arvensis L. en Mayor Otaño (Itapúa- Paraguay). Informe final. San Lorenzo: FCA, UNA, pp. 194-202

Paulus, A.O. (1990). Fungal Diseases of Strawberry. HortScience, 25(8), 885-889. DOI: https://doi.org/10.21273/hortsci.25.8.885.

Paynter, M., Gomez, A., Ko, L. & Herrington, M.E. (2016). Research into crown rot and wilt diseases of strawberries in Queensland. XXIX International Horticultural Congress on Horticulture: Sustaining Lives, Livelihoods and Landscapes (IHC2014): II 1117, pp. 163-170). DOI: https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2016.1117.26.

Petrasch, S., Knapp, S. J., van Kan, J.A.L. & Blanco-Ulate, B. (2019). Grey mould of strawberry, a devastating disease caused by the ubiquitous necrotrophic fungal pathogen Botrytis cinerea. Molecular Plant Pathology , 20 (6), 877-892. DOI: https://doi.org/10.1111/mpp.12794.

Roberts, D.P., Lakshman, D.K., McKenna, L.F., Emche, S.E., Maul, J.E. & Bauchan, G. (2016). Seed treatment with ethanol extract of Serratia marcescens is compatible with Trichoderma isolates for control of damping-off of cucumber caused by Pythium ultimum. Plant Disease , 100(7), 1278-1287. DOI: https://doi.org/10.1094/PDIS-09-15-1039-RE.

Sanabria Velázquez, A. D. y Grabowski, C.J. (2016). Control biológico de Rosellinia sp. causante de la muerte súbita en macadamia (Macadamia integrifolia) con aislados de Trichoderma spp. Investigación Agraria , 18(2), 7-86. DOI: https://doi.org/10.18004/investig.agrar.2016.diciembre.

Sawangsri, P., Pengnoo, A., Suwanprasert, J. & Kanjanamaneesathian, M. (2007). Effect of Trichoderma harzianum biomass and Bradyrhizobium sp. strain NC 92 to control leaf blight disease of bambara groundnut (Vigna subterranea) caused by Rhizoctonia solani in the field. Songklanakarin Journal of Science and Technology, 29(1), 15-24.

Steyaert, J., Hicks, E., Kandula, J., Kandula, D., Alizadeh, H., Braithwaite, M., Yardley, J. & Mendoza-Mendoza, A. (2016). Methods for the evaluation of the bioactivity and biocontrol potential of species of Trichoderma. In: Glare, T., Moran-Diez, M. (eds) Microbial-Based Biopesticides. Methods in Molecular Biology, 1477. Humana Press: New York, NY. DOI: https://doi.org/10.1007/978-1-4939-6367-6_3.

Whipps, J. M. (1987). Effect of media on growth and interactions between a range of soilborne glasshouse pathogens and antagonistic fungi. New Phytologist, 107(1), 127-142. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1469-8137.1987.tb04887.x.